Lasst uns in diesem Thread alles verfügbare Material zusammentragen und darüber diskutieren, wo die Vorteile und Nachteile der einzelnen Methoden liegen und welche Erfahrungen ihr gemacht hat.
Bei mir hat die Übertragung so begonnen, dass ich ein Glas Flüssigmycel auf einen Topf aus Buchenholzchips geschüttet habe, die ich davor in Wasser aufgeweicht hatte.
Das funktioniert prinzipiell, doch im Laufe der Zeit begann ich zu überlegen, ob man das nicht noch effektiver machen könnte und dem Pilz einen deutlichen Vorsprung gegenüber konkurrierenden Mikroorganismen geben könnte. Also begann ich, in Gläsern aufgeweichte Buchenholzchips 90 Minuten zu sterilisieren und mit Flümi zu beimpfen, etwa so als ob man Cubensis züchten würde.
Das funktioniert zu meiner Überraschung aber nur gleich gut, wie wenn man Flümi einfach über Chips giesst.
Aktuell teste ich die Methode, Pappe mit Azomite, Malzextrakt und Pechnelkenextrakt in einem Glas zu sterilisieren und dieses dann mit Flümi zu beimpfen.
Das funktioniert beim Serbica und beim Weraoa sehr gut, bei 2 anderen Sorten bei denen dies ebenfalls teste, nämlich dem Allenii und Ovoideocystidiata, bin ich mir noch nicht sicher.
Die neueste Methode die mir jetzt vorschwebt und die ich gerade teste, ist, Reste von Maiskolben von einem Maisfeld zusammen mit den gleichen Nährstoffen in einem Glas zu sterilisieren und zu beimpfen.
In weiter Folge möchte ich dann auch noch Oberflächenkulturen testen.
Lasst uns in diesem Thread mal alles sammeln, was ihr bisher gemacht habt, um den Pilz möglichst effektiv und vital auf Holzchips zu bekommen.
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